培养细胞转染效率的测定

什么是转染?

转染是将核酸引入动物细胞,使细胞引入特定基因来表达感兴趣的蛋白质的过程。通过转染引入的核酸称为外源核酸。基因可以在没有病毒的情况下被引入目标细胞,这与转导不同,转导需要病毒来转移DNA。
核酸可以被暂时引入以表达蛋白质,或者与宿主细胞的基因组一起复制。暂时引入核酸称为瞬时转染,同时进行核酸复制的转染称为稳定转染。因此,转染可用于增强或抑制转染细胞中特定基因的表达,或生成重组蛋白。

转染的原则

细胞膜是由含有蛋白质的脂质双分子层组成的,它带有负电荷,可以阻止带负电荷的大核酸(如DNA和RNA)通过。为了使转染成为可能,核酸必须以其他方式通过细胞膜。其他允许核酸通过细胞膜的方法包括化学、生物和物理方法,每种方法的原理不同。本节以将基因导入细胞为例解释每种方法。

化学转染

通过化学转染,核酸的负电荷被变为正电荷或中和。方法包括脂质充填和磷酸钙共沉淀,其中脂质充填是最常见的。
脂质合成方法是通过带正电的合成脂质试剂头基团和带负电的核酸之间的静电相互作用,构建阳离子脂质试剂络合物。阳离子脂质试剂配合物与带负电荷的细胞膜表面相互作用,使核酸有效地进入细胞。这使细胞在释放到细胞质之前通过内吞作用吸收核酸。Lipofection是一种简单易行的转染方法,毒性低,操作性好。
这种方法可以有效地吸收核酸、DNA和RNA。脂质转染方法也可用于瞬时和稳定转染。
然而,对于化学转染,条件必须适合细胞类型和培养,导致转染效率低于物理和生物方法。

生物转染

生物转染法涉及病毒。基于病毒的转染是高效的,因为它利用了病毒的传染性。这种方法用于核酸摄取困难的细胞中蛋白质的过表达。这种方法是理想的体内转染,使其成为临床研究中最常用的方法。腺病毒、逆转录病毒和慢病毒用于体内基因摄取。
在生物转染中,在基因复制过程中产生重组病毒,在提取病毒载体之前,使用带有辅助功能的基因转染细胞并进行繁殖。然后生成包含待合并基因的病毒载体,将所需的遗传物质传递给细胞。
尽管基于病毒的转染对活生物体具有高度适应性,例如用于动物实验,但制备病毒可能很困难,需要遵守生物安全标准。插入突变和免疫系统失活也有问题。

物理转染

物理转染涉及到刺激细胞表面通过细胞膜引入核酸。方法包括电穿孔、微注射和激光加工,其中电穿孔是最常见的。在电穿孔过程中,核酸和细胞悬浮在导电溶液中,然后夹在阳极和阴极之间。然后持续施加电脉冲在细胞膜上制造小孔。然后,这些孔被用来将带电荷的细胞外核酸(如DNA和rna)通过细胞膜转移。
物理转染转染效率高,比化学和生物转染方法更容易。然而,电脉冲可能导致细胞死亡,电脉冲造成的孔可能无法闭合,导致细胞毒性,因此需要昂贵的专门设备。

提高转染效率

转染效率是靶细胞对核酸的吸收效率。本节介绍了提高转染效率需要考虑的各种因素。

细胞活力和传代
转染前细胞活力应至少为90%。传代——即细胞从培养物转移到新培养基的过程,也应在转染后24小时内进行。另外,要注意过度传代会对转染效率产生不利影响,因此应仔细记录传代数。
细胞培养和试剂
con流畅性是指转染细胞的理想增殖状态,根据检测目的、方法、细胞类型等的不同而不同。如果汇合度过高,则可能导致核酸吸收不足,或降低转基因表达。如果汇合度过低,细胞间接触可能不会发生,从而防止增殖。
培养用于转染的细胞的最佳培养基取决于细胞、试剂和细胞类型血清。例如,在将DNA导入干细胞时,使用的试剂可以将核酸导入胚胎干细胞(ES细胞)、诱导多能干细胞(iPS细胞)、人成体干细胞等高效低毒的细胞。将RNA导入干细胞时,使用能够导入siRNA(小干扰RNA)、mRNA(信使RNA)和dsRNA(双链RNA),同时保护干细胞不降解的试剂。
转染方法选择
转染方法包括化学、生物和物理转染。化学和物理转染通常用于培养细胞的靶向转染。生物转染对转染培养细胞和动物细胞均有效。然而,根据细胞类型和条件的不同,化学转染可能导致转染效率或化学毒性的变化,对某些细胞进行选择性转染可能比较困难。同时,物理转染需要特殊的仪器和设备,核酸很容易被破坏。生物转染也有污染的风险,当将治疗基因引入细胞染色体时插入突变,以及基于免疫的失活。
由于每种方法都有其缺点,因此对于转染细胞与靶细胞的特异性结合,选择转染效率高、重复性高的转染方法至关重要。
其他因素
转染效率也因使用血清或抗生素而异。例如,当引入DNA时,在含有血清的培养基中培养细胞可以提高效率。在含有抗生素的培养基中进行瞬时转染也能提高转染效率。
然而,抗生素也会引起细胞毒性,对细胞产生不利影响,降低转染效率。此外,DNA和RNA载体都可以用于瞬时转染,但只有DNA载体可以用于稳定转染。

测量转染效率

测量转染效率的一种一般方法是使用荧光显微镜。转染效率的测量方法是计算观察到的细胞总数和表达荧光的细胞数量,并对这些值进行评分。

转染效率测量

在基因导入过程中,将含有适当细胞密度的生长培养基的细胞悬液播种到孔板中并孵育。然后,将制备好的复合物添加到细胞中,摇动孔板,再次在培养箱中培养细胞24小时。孵育结束后,观察细胞的表达,以测定转染效率。转染效率通常用荧光染料和荧光显微镜来测量。

转染效率测量的挑战

传统的荧光显微镜存在各种各样的问题,通常难以使用。
首先,观察荧光需要将标本带到暗室进行实验,可操作性极差。准确提取细胞的轮廓也很困难,阻碍了细胞数量的准确计数。
此外,为了计数和分析细胞数量,需要与荧光显微镜系统分离的软件,导致许多客户注意到难以进行顺利分析。

BZ-X800一体机荧光显微镜包括一个内置的标本外壳,允许用户在明亮的房间进行荧光成像。BZ-X800精确提取和量化相位对比度图像轮廓,即使是培养的细胞具有细微的亮度差异,并允许用户指定一个细胞掩膜面积,以测量测量目标的数量和表面积比。BZ-X800还可以测量细胞表达水平定量测量转染效率,而不需要单独的软件。

使用相位对比图像计数细胞
使用相位对比图像计数细胞
使用细胞作为掩膜区域计算表达事件(荧光点)
使用细胞作为掩膜区域计算表达事件(荧光点)
使用细胞作为掩膜区域计算表达事件(荧光点)
细胞
903
表达式
89
效率
9.9%

物镜:CFI Plan Fluor DL 10x

使用一体化荧光显微镜BZ-X800